Исследования были проведены на АОЗТ «Птицефабрика «Новомышастовская» (Краснодарский Край).
Целью первого опыта было определение приживляемости бифидобактерий в желудочно-кишечном тракте цыплят при применении пробиотики «Зоонорм».
Были отобраны 2 группы цыплят по 10 голов в каждой. Первую группу выкармливали в течение 2-х дней сухим кормом с введенным в него пробиотиком. Суточная доза на цыпленка 1х106 Мк. Вторая группа цыплят оставалась контрольной и получала обычный корм.
После 2-х дневного применения препарата цыплят выдерживали 12 часов без корма и препарировали в стерильных условиях. У цыплят опытной группы среднее содержание бифидобактерий в содержимом мышечного желудка составило — (4±2)х104, в двенадцатиперстной кишке — (2±2)х105, дистальном отделе тонкого кишечника — (8±2)х105, в фекалиях — (2±2)х107. В контрольной группе бифидобактерии не были найдены.
Во втором опыте проводили изучение эффективности «Зоонорма» в сравнении с другими добавками по клиническим и микробиологическим показателям.
Суточные цыплята были разделены на 7 групп по 120 голов в каждой. Первая группа получала нативный корм и являлась контрольной. Во 2-ой группе применяли левомицитин в количестве 50 мг на кг веса. В третьей группе применяли фуразолидон из расчета 0,2 г на 100 цыплят. Птицам 4-ой группы давали «Зоонорм» из расчета 0,005 дозы на 1 г веса. В группе № 5 применяли активированный уголь из расчета 0,0003 г на 1 кг веса.
Шестая группа получала «Зоонорм» (0,005 дозы на 1 г веса) и активированный уголь (0.0003 г на 1 кг веса). Седьмая группа получала «Зоонорм» (0,005 дозы на 1 г веса), активированный уголь (0,005 дозы на 1 г веса) и фуразолидон (0,02 г на 100 цыплят).
Курс введения препаратов составлял 10 дней.
Микробиологические исследования проводили на 3-й день после окончания введения препаратов. Для проведения исследований из каждой группы цыплят отбирали методом случайной выборки 20 птиц, препарировали в асептических условиях, выделяя содержимое прямой кишки, подвздошную и двенадцатиперстную кишки и печень. Печень методом отпечатка высевали на мультисульфитный агар, а от кишечников отделяли фрагменты, дезинтегрировали их до состояния однородной суспензии, а затем высевали на соответствующие среды.
Результаты микробиологических исследований представлены в таблице 1.
|
№ групп |
Иссл. материал |
Патогенная микрофлора |
Бифидофлора |
Нормальная микрофлора |
Общее количество E.coli в 1 мг |
|
|---|---|---|---|---|---|---|
|
Выявляемость, % |
Высеваемость |
|||||
|
1. «Контроль» |
фэцес слизистая |
25 25 |
E.coli (Л-) E.coli (Л-) |
2,25х102 МК/мг |
E.coli |
3,2х104 |
|
2. «Левомицитин» |
фэцес слизистая печень |
35 35 5 |
E.coli (Л-) E.coli (Л-) S.enterif. |
1,25х102 МК/мг |
E.coli E.coli |
2,7х103 1,8х103 |
|
3. «Фуразолидон» |
фэцес cлизистая |
15 45 45 |
Klebsiella E.coli (Л-) E.coli (Л-) |
— — |
E.coli E.coli |
6.6х103 1,3х103 |
|
4. «Зоонорм» |
фэцес слизистая |
— — |
— — |
7,5х108 МК/мг 2х107 МК/мм2 |
E.coli E.coli |
3,1х104 1,6х103 |
|
5. «Акт.уголь» |
фэцес слизистая |
5 — |
E.coli (Л-) — |
5,3х103 МК/мг 2х103 МК/мм2 |
E.coli E. coli |
1,7х104 8,6х103 |
|
6. «Акт.уголь + Зоонорм» |
фэцес слизистая печень |
— — 0,8 |
— — S.puliorum |
7,5х108 МК/мг 1,1х104 МК/мм2 |
E.coli E.coli |
2,6х104 1,2х102 |
|
7. «Акт.уголь + Зоонорм + фуразолидон» |
фэцес слизистая |
10 5 |
E.coli (Л-) E.coli (Л-) |
7,5х108 МК/мг 1,3х105 МК/мм2 |
E.coli E.coli |
2,2х104 3,4х102 |
Результаты проведенных исследований показывают, что в группах 1,2,3, где пробиотик не применялся, была зарегистрирована высеваемость лактозонегативных кишечных палочек от 25 до 45 % по удельному содержанию E.coli, а также микроорганизмов рода Proteus, Klebsiella, а также из рода Salmonella – S. Enterofidis. Содержание бифидобактерий в фэцес этих групп минимально, а в третьей группе они отсутствуют вообще.
Полное отсутствие лактозонегативных E.coli отмечалось в 4-ой группе, где птицы получали только пробиотик и в 6 группе, где птицы получали Зоонорм вместе с активированным углем. Однако в 4-ой группе содержание бифидобактерий и в фэцес и в слизистой было выше – 108 и 107 соответственно. Содержание бифидобактерий в слизистой в 6 группе было – 104.
В пятой группе содержание бифидобактерий было достаточно низким — 103, высеивались в небольшом количестве (5%) лактозонегативные E.coli.
В седьмой группе высеивались, хотя и в незначительных количествах лактозонегативные E.coli.(5-10%), содержание бифидобактерий в фэцес высокое 108, на слизистой несколько меньше105.
Выводы: Изучение приживляемости штамма № 1 Bifidum bifidum, входящего в состав пробиотика «Зоонорм» в ЖКТ цыплят показало, что введение пробиотика однодневным цыплятам по 0,01 дозе в сутки уже на второй день создает защитный фон на уровне 1,6х104 МК/мм2, при этом высеваемость бифидобактерий в фэцес достигает 2,0х105 МК/мг (норма для цыплят в двенадцатиперстной кишке – 106-107, в фэцес – 108-109).При применении препарата в течение 10 дней полученный эффект закреплялся и достигал естественного уровня содержания бифидофлоры у цыплят.
Микробиологические исследования подтвердили антагонистическую активность препарата в отношении лактозонегативных кишечных палочек, протеев, стафилококков, сальмонелл и клебсиел.
Таким образом, результаты исследований доказали, что введение в корм пробиотика «Зоонорм» без каких либо других, и в частности антибиотических добавок позволяет поддерживать нормальный биоценоз ЖКТ цыплят.